Degradación del organofosforado
En la actualidad, hay pocos informes sobre la degradación de organofosforados por Trichoderma en el país y en el extranjero, y la mayoría de ellos se centran en la actividad de la fitasa de Trichoderma. En 1998, Nevalainen et al. informaron que tres cepas de T. reesei podían secretar fitasa de manera eficiente, estudiaron su sistema de expresión y solicitaron una patente en los Estados Unidos. En 1999, Nasi et al. reesei también posee actividad fitasa y fosfatasa ácida; la prueba de comparación de alimentación mostró que la fitasa de T. reesei tiene una mayor tasa de utilización de fitato fósforo en el alimento que la fitasa y la fosfatasa ácida de Aspergillus niger. Wang Shihua et al. (2005) informaron las condiciones y propiedades enzimáticas de la fitasa producida por la cepa mutagenizada de T. viride LH374. Li Xiaolong (2010) descubrió que diferentes cepas de Trichoderma pueden producir círculos transparentes hidrolíticos en placas de medio de fitato de calcio. Posteriormente, aislaron los genes de fitasa de múltiples cepas de Trichoderma diferentes, lo que indica que Trichoderma generalmente tiene actividad fitasa. Sin embargo, es difícil medir la actividad fitasa de la solución enzimática cruda de Trichoderma con el método común actual de determinación de fósforo. Por lo tanto, Li Xiaolong (2010) utilizó la cantidad de degradación del fitato del sustrato como indicador de la actividad enzimática para estudiar la capacidad de Trichoderma para producir fitasa y su método de determinación, y estableció un método eficaz adecuado para la determinación de la actividad de la fitasa de Trichoderma. Además, Liu Xin et al. (2002) informaron que Trichoderma Y tiene la capacidad de degradar clorpirifos y metamidofos. Los resultados de la medición de la eficiencia de degradación mostraron que la tasa de degradación de Trichoderma Y a 50 mg/L de clorpirifos alcanzó el 88,53% después de 7 días; La tasa de degradación de 500 mg/L de clorpirifos después de 7 días fue del 47,67 %; la tasa de degradación de 5000 mg/L de clorpirifos después de 7 días fue del 21,87 %; la tasa de degradación de 50 mg/L de metamidofos después de 3 días fue del 100 %; mg/L de metamidofos alcanzó el 80,38% después de 7 días; no tuvo ningún efecto de degradación en 5000 mg/L de metamidofos.
El principal mecanismo de descomposición microbiana del fósforo es que estos microorganismos pueden secretar ácidos orgánicos, como ácido fórmico, ácido acético, ácido propiónico, ácido glicólico, ácido fumárico, ácido láctico, ácido succínico, etc., que por un lado, puede reducir el pH del suelo, convierte el fósforo insoluble en fósforo soluble para que las plantas lo absorban y utilicen, por otro lado, puede combinarse con hierro, aluminio y otros iones para formar quelatos, disolviendo así los fosfatos insolubles. siendo absorbido. En la actualidad, se cree generalmente que el efecto solubilizador de fósforo de las bacterias solubilizadoras de fosfato es uno de los mecanismos más importantes para promover el crecimiento de las plantas en suelos de fertilidad media y baja.
En la producción agrícola, la solubilización de fosfato de Trichoderma tiene amplias perspectivas de aplicación. Por un lado, puede degradar el fósforo inorgánico insoluble o poco soluble del suelo, convirtiéndolo en fósforo soluble para la absorción de los cultivos, reduciendo el uso de. los fertilizantes fosfatados en la producción agrícola, por otro lado, pueden ayudar a degradar el abono orgánico y favorecer el crecimiento de las plantas. Si podemos obtener una cepa de Trichoderma que tenga un biocontrol eficaz y efectos eficientes de solubilización del fósforo, ampliará enormemente el espacio de aplicación de Trichoderma en la agricultura y también desempeñará un gran papel en la promoción de la producción agrícola.